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第二节 显微镜活体检查法
微生物的活体检查,广泛应用于细菌的形态、特征和酵母菌及真菌的鉴别。
一、 细菌的活体观察
(一) 常用方法
取培养液在显微镜下直接进行活体检查,以判定其是否有菌生长,常用方法有:
1. 压滴法
(1) 取培养物置洁净载玻片上(固体培养物用生理盐水稀释成适宜浓度后滴于载玻片上)。
(2) 盖上盖玻片,先使一边与液滴接触,慢慢放下。
(3) 将载玻片置显微镜下观察。
2. 悬滴法
(1) 取一凹玻片,在凹窝四周点以少许凡士林。
(2) 取菌悬少许置盖玻片中央,置显微镜下。
(3) 将凹玻片反转,以凹窝的中央处正对液滴,覆盖其上并轻压,使盖玻片粘在凹玻片上(或载玻片上)。
(4) 将凹玻片和盖片一起迅速地反转,置显微镜下观察。
(5) 观察时不要将菌液对准悬滴中央,因为中央液层厚,不易对焦,而应将视野对准液滴的边缘部分。
3. 毛细管法
主要用于厌氧菌的动力检查。
(1) 用长60~70mm、孔径0.5~1mm洁净毛细管,吸入培养液后用喷灯将毛细管两端熔封。
(2) 用胶纸将毛细管两端固定在载物台(或载玻片上),按上法检查。
(二) 注意事项
1. 盖玻片及载玻片均应洁净、无划痕。
2. 注意细菌同杂质的区别。细菌菌体小而透明,常呈淡绿色的小亮点或杆状,呈布朗运动(一种不规则的无定向的颤动),杂质、颗粒则不透明、无布朗运动现象。
3. 检查细菌动力时必须用新鲜的培养物,一般培养16~18h,时间过长,细菌鞭毛常衰退和脱落,有动力的细菌在液体中一般为滚动、摆动或有方向的前进,应与布朗运动或液体的流动相区别。
4. 必要时可在菌液中加入少许0.1%亚甲蓝染色液,易于观察。
二、 霉菌的活体观察
(一) 培养物直接观察
将培养物直接放在体视显微镜或生物显微镜低倍镜下直接观察,或用小刀切取霉菌菌落直径约1/3边端部位一小块,用镊子将其小心移至载玻片用低倍镜观察。一般可见菌丝、孢子囊或分生孢子头及其着生情况。若为液体培养物,可用吸管吸取球状生长物,置载玻片上,低倍镜观察,可见其菌丝体。
(二) 压片法
在洁净玻片上,滴一滴乳酸苯酚液,再用小镊或小刀取霉菌菌落一小块置于其中,并以针将菌丝仔细分开,然后将盖玻片轻轻压上,注意勿形成气泡,在显微镜下观察。此法简便易行,是观察霉菌的常用方法。乳酸苯酚液不仅可杀菌,而且可使菌丝透明、柔软、不易折断。观察霉菌不宜用水制片,由于渗透压差别大,霉菌菌丝易变形、孢子易飞散。
乳酸苯酚液(乳酚油),由苯酚20g加入20ml水中,加热溶解,然后加入比重1.21的乳酸20g和比重1.25的甘油40g混匀制成。
(三) 载片培养法
对菌丝分枝和孢子及孢子梗的着生状态观察具有较好的效果。
取圆形滤纸一张,铺于培养皿底部(也可以放2~3个小棉球于皿底),在滤纸上放一U形玻棒,U形玻棒上平放一载玻片,盖好皿盖,灭菌。平皿内注入灭菌琼脂培养基,冷凝后,用灭菌小刀将琼脂切成 1cm 2块,移至载玻片中央。用接种针将孢子悬液接种在琼脂四周,然后盖上灭菌盖玻片。向滤纸或棉球上滴加2~3ml灭菌的20%甘油液以防培养基干燥。盖上皿盖于25~30℃培养。连续观察其自然生长状态和菌丝分枝、孢子梗着生与孢子等细微结构。
本法也可用于培养酵母菌,观察假菌丝;培养放线菌,观察基质菌丝、气生菌丝或孢子丝,但需换用适宜的琼脂培养基。
三、 酵母菌的活体观察
(一) 压滴法
1. 于洁净载玻片中央,滴加一滴灭菌水。
2. 取一白金铒新鲜培养物于载玻片上,与水混合均匀,或取液体培养物,置载玻片上,覆盖盖玻片。
(1) 在低倍镜下可清楚看到酵母细胞及其出芽繁殖。
(2) 鉴别酵母菌菌细胞,可在盖玻片周围滴加适量的0.1%亚甲蓝液。在显微镜下可见到死细胞被染成蓝色、活细胞无色;因活细胞新陈代谢旺盛,细胞还原能力强,亚甲蓝进入细胞后即被还原成无色。
(二) 假菌丝的观察
将待检菌接种于马铃薯葡萄糖液体培养基中,于28℃培养1~2天,如见液体表面长出一层白色膜状物,取一小块,置载玻片上,加水、铺平后覆以盖玻片,在显微镜下观察。常可见到具明显分枝的假菌丝。
(三) 子囊孢子的观察
子囊孢子是酵母菌的有性繁殖方式,一般情况下不常见。观察子囊孢子的形成,可将待检菌接于麦氏(McClary)培养基或克氏(Kleyn)培养基上,于28~30℃培养7天。挑取培养物,制片,显微镜下子囊孢子为圆形或椭圆形,或圆柱等其他形态,内有子囊孢子1至数个,子囊孢子多为圆形或其他形态,随种而异。